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【学术前沿】超高分辨率图像分析助力运动纤毛病诊断

2022-09-15 17:00
来源:澎湃新闻·澎湃号·政务
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以下文章来源于细胞纤毛 ,作者CIliopathy Lab

细胞纤毛.

国家儿童健康与疾病临床研究中心(浙江大学医学院附属儿童医院)纤毛病实验室,提供纤毛与纤毛病相关研究和科普信息。

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原发性纤毛运动障碍(primary ciliary dyskinesia,PCD)是最常见的运动纤毛病(详见「“毛”病专栏 」原发性纤毛运动障碍(PCD))。编码运动纤毛相关蛋白的基因突变和纤毛的结构缺陷是PCD的主要病因(图1)。据不完全统计,PCD的全球发病率高于1:7554,并且患者通常在出生后即出现相关症状1,2。然而,目前临床上尚不能够完全治愈PCD,因此PCD的早期有效诊断是改善患者生活质量的关键。

图1 PCD的致病基因和纤毛超微结构改变3

多伦多大学Vito Mennella团队和多伦多儿童医院Sharon D. Dell团队在Science Translational Medicine以封面形式发表了题为“A quantitative super-resolution imaging toolbox for diagnosis of motile ciliopathies”的研究成果4。该研究报道了一套基于超分辨率成像工具和自动化定量图像分析的PCD诊断流程,为PCD现有的诊断方法和病理研究提供了有力的帮助。

首先,作者利用三维结构光照明技术(three-dimensional structured illumination microscopy,3D-SIM),对来自健康志愿者鼻腔组织的气道多纤毛细胞(airway multiciliated cell)的PCD相关蛋白进行自动化成像,由此生成PCD相关蛋白图谱。接下来,作者开发了一套MATLAB程序,以实现对健康志愿者和患者的PCD相关蛋白图谱的定量分析,通过比较PCD相关蛋白在整个细胞和纤毛的分布情况,准确分辨出常规诊断方法无法识别的蛋白(如DNAH5和DNAH11)表达和定位模式差异(图2)。随后,作者又对上述方法进行了优化,比如采用机器学习的方法来提高检测流程的自动化程度、使用随机光学重建显微技术(stochastic optical reconstruction microscopy,STORM)替代3D-SIM以提高成像分辨率等,由此为PCD提供了一种直接、特异的分子诊断方法。

图2 A. 3D-SIM定量分析流程图。B.携带不同PCD基因突变模式的患者和健康志愿者的比较分析;左:患者携带DNAH5基因突变(1.6 kb片段缺失& 1无义突变)引起DNAH5纤毛定位缺陷;中:患者携带DNAH5基因突变(1错义突变& 1意义不明的无义突变)引起DNAH5蛋白异常定位于纤毛近端,右:患者携带DNAH11基因突变(500 bp片段缺失& 3意义不明的变异)引起DNAH11纤毛定位缺陷。C. 3D-SIM定量分析统计结果。

在纤毛摆动的过程中,位于运动纤毛基体(basal body)的基足(basal foot)会指向摆动的方向,这一性质被称为旋转极性(rotational polarity)。PCD患者由于纤毛结构缺陷会引起运动极性的异常,因此可以作为潜在的诊断标准。此前采用的TEM方法相对耗时,通量低,只能用于定性分析。为了克服这些限制,作者首先采用空气-液体界面(air-liquid interface,ALI)培养系统来诱导多纤毛细胞形成类似呼吸道的假复层纤毛上皮(pseudostratified ciliated epithelium),然后通过MATLAB程序对3D-SIM自动化成像的基体标记蛋白POC1B和基足标记蛋白Centrolin进行分析,以计算其旋转极性值。根据以上方法,作者准确地评估了PCD患者运动纤毛的旋转极性缺陷(图3)。

图3 A.健康志愿者和PCD患者的运动纤毛旋转极性差异。B. 3D-SIM成像的基体(POC1B)和基足(Centrolin)。C.健康志愿者(上)的运动纤毛旋转极性方向一致,PCD患者(下)的运动纤毛旋转极性无方向性;D.健康志愿者和PCD患者的旋转极性统计分析。

小编认为,通过超分辨率成像工具对PCD患者运动纤毛的结构和旋转极性缺陷进行量化分析,大大提高了PCD诊断的准确性,同时有助于理解临床上发现的一些意义未明突变的作用,期待能够在不久的将来投入到临床实践中。

参考文献:

[1] Lucas JS, Davis SD, Omran H, Shoemark A. Primary ciliary dyskinesia in the genomics age. Lancet Respiratory Medicine. 2020;8(2):202-216.

[2]Hannah WB, Seifert BA, Truty R, et al. The global prevalence and ethnic heterogeneity of primary ciliary dyskinesia gene variants: a genetic database analysis. Lancet Respiratory Medicine. 2022;10(5):459-468.

[3] Horani A, Ferkol TW. Advances in the genetics of primary ciliary dyskinesia: clinical implications. Chest. 2018;154(3):645-652.

[4]Liu Z, Nguyen QPH, Guan Q, et al. A quantitative super-resolution imaging toolbox for diagnosis of motile ciliopathies. Science Translational Medicine. 2020;12(535):eaay0071.

来源:细胞纤毛

国家儿童健康与疾病临床研究中心纤毛病实验室(浙江大学医学院附属儿童医院)

内容:金昊

排版:杨凤

原标题:《【学术前沿】超高分辨率图像分析助力运动纤毛病诊断》

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